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GPR56 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420657-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
GPR56 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-420657-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Adgrg1 kodiert den Adhäsions‑G‑Protein‑gekoppelten Rezeptor GPR56 (ADGRG1), einen Membranrezeptor, der Signale aus der extrazellulären Matrix mit intrazellulärer Signalübertragung verknüpft und so Zelladhäsion, Migration und Polarität reguliert. GPR56 wird in N‑ und C‑terminale Fragmente prozessiert und kann an heterotrimere G‑Proteine koppeln, wodurch Signalwege beeinflusst werden, die mit Zytoskelettdynamik, Mechanotransduktion und entwicklungsbiologischer Musterbildung verbunden sind. In Mausmodellen wird Adgrg1 häufig untersucht, um die neuronale und gliale Entwicklung sowie das Verhalten von Immunzellen zu verstehen, bei denen rezeptorvermittelte Adhäsion und Motilität entscheidende Determinanten der Gewebeorganisation sind. Eine fehlregulierte GPR56‑Aktivität wurde mit neuroentwicklungsbezogenen und myelinisierungsassoziierten Phänotypen in Verbindung gebracht und wird häufig in Kontexten betrachtet, in denen veränderte Zell‑Matrix‑Interaktionen zu krankheitsrelevanter Biologie beitragen.
GPR56 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Adgrg1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Adgrg1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Adgrg1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Adgrg1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.