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FTβ CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403479-ACT | 20 µg | $397.00 |
FNTB kodiert die Beta-Untereinheit der Protein-Farnesyltransferase, eines Schlüsselenzyms im Mevalonat-/Isoprenoid-Biosyntheseweg, das die Farnesylierung von Proteinen mit CaaX-Motiv katalysiert. Diese Lipidmodifikation fördert die Membranassoziation und reguliert Lokalisation und Signalweiterleitung von Substraten wie GTPasen der RAS-Familie und nukleären Laminen und beeinflusst damit Proliferation, vesikulären Transport und die Zytoskelettdynamik. FTβ bildet zusammen mit der Alpha-Untereinheit das aktive Heterodimer und unterstützt mehrere durch kleine GTPasen gesteuerte Signalwege, darunter MAPK- und PI3K-Signaloutputs. Fehlregulierte Prenylierung und veränderte Farnesyltransferase-Aktivität wurden mit onkogenen Signalnetzwerken sowie laminassoziierten Defekten des Zellkerns in Verbindung gebracht, wodurch FNTB ein relevanter Knotenpunkt für mechanistische Studien in der Krebsbiologie und bei zellulären Stressantworten ist.
FTβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen FNTB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
FTβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des FNTB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der FNTB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen FTβ-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native FNTB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von FTβ-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des FTβ-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem FNTB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.