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Dvl-3/Dishevelled 3/DVL3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401041-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Dvl-3/Dishevelled 3/DVL3 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401041-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
DVL3 kodiert Dishevelled 3 (Dvl-3), ein zytoplasmatisches Gerüstprotein, das Wnt-Signale weiterleitet, indem es rezeptornahe Ereignisse downstream von Frizzled und LRP5/6 koordiniert. Dvl-3 ist sowohl an der kanonischen β‑Catenin/TCF‑Transkriptionsregulation als auch an nichtkanonischen Signalwegen der planaren Zellpolarität und des Wnt/Ca²⁺‑Signalwegs beteiligt und beeinflusst dadurch Zellpolarität, Zytoskelett-Remodelling, Migration und die Musterbildung während der Entwicklung. Über diese Signaloutputs trägt DVL3 zur Kontrolle von Proliferations- und Differenzierungsprogrammen bei und wird häufig in Kontexten untersucht, in denen Wnt-Signalwege umprogrammiert werden. Eine Fehlregulation der DVL3-abhängigen Signalübertragung wurde mit der Aktivierung onkogener Signalwege, veränderten Invasionsphänotypen sowie mit breiteren entwicklungs- und neurologischen Krankheitsmechanismen in Verbindung gebracht, die auf einer gestörten Kontrolle des Wnt-Signalwegs beruhen.
Dvl-3/Dishevelled 3/DVL3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DVL3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DVL3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DVL3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DVL3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.