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DAP10 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402426-ACT | 20 µg | $397.00 |
HCST kodiert das DNAX-Aktivierungsprotein 10 (DAP10), einen transmembranen Adapter, der NKG2D und verwandte Rezeptoren in humanen zytotoxischen Lymphozyten mit der intrazellulären Signalübertragung koppelt. Über sein YINM-Motiv rekrutiert DAP10 PI3K sowie Grb2/Vav1 und fördert dadurch die Aktivierung der Akt- und MAPK-Signalwege; dies unterstützt die Ausbildung der immunologischen Synapse, die Zytokinproduktion und die zellvermittelte Zytotoxizität. Diese Signalachse reguliert die Immunüberwachung durch NK-Zellen und CD8⁺-T-Zellen gegenüber gestressten, infizierten oder transformierten Zellen und beeinflusst den inflammatorischen Crosstalk innerhalb der Tumormikroumgebung. Eine fehlregulierte HCST/DAP10-Aktivität wurde mit veränderten angeborenen und adaptiven Immunantworten in Verbindung gebracht, die für die Krebsimmunbiologie, Virusinfektionen und autoimmune Entzündungen relevant sind.
DAP10 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen HCST-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
DAP10 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des HCST-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der HCST-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen DAP10-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native HCST-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von DAP10-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des DAP10-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem HCST-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.