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CYP24 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401233-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CYP24 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401233-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CYP24A1 kodiert das mitochondriale Cytochrom‑P450‑Enzym CYP24A1 (CYP24), einen zentralen Regulator des Vitamin‑D‑Stoffwechsels, der die 24‑Hydroxylierung und die anschließende Inaktivierung von 1,25‑Dihydroxyvitamin D3 und 25‑Hydroxyvitamin D3 katalysiert. Durch die Kontrolle des Calcitriol‑Umsatzes moduliert CYP24A1 VDR‑abhängige Transkriptionsprogramme, die die Calcium‑ und Phosphathomöostase, die epitheliale Differenzierung und die Immun-Signalübertragung beeinflussen. Eine veränderte CYP24A1‑Aktivität wurde mit einer dysregulierten Vitamin‑D‑Signalgebung und Störungen des Mineralstoffwechsels in Verbindung gebracht, und seine Expression wird häufig in Kontexten untersucht, in denen das Gleichgewicht der VDR‑Signalwege gestört ist, darunter Krebsbiologie und entzündliche Zustände. Als mitochondriales P450 ist CYP24A1 zudem über seine Abhängigkeit von Elektronentransferpartnern mit zellulären Redoxprozessen und metabolischer Anpassung verknüpft.
CYP24 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CYP24A1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CYP24A1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CYP24A1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CYP24A1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.