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CD42b CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401273-ACT | 20 µg | $397.00 |
GP1BA kodiert die Alpha-Kette des Thrombozyten-Oberflächenglykoproteins Ib (CD42b), einen essenziellen Bestandteil des GPIb-IX-V-Rezeptorkomplexes, der unter hohen Scherkräften die Anheftung von Thrombozyten an den von-Willebrand-Faktor vermittelt. Dieser Rezeptor löst Signalereignisse aus, die Thrombozytenadhäsion, -aktivierung und die Thrombusbildung unterstützen, und ist dabei mit der Umgestaltung des Zytoskeletts sowie nachgeschalteten, gerinnungsbezogenen Prozessen verknüpft. Veränderungen der GP1BA-Expression oder -Funktion stehen in Zusammenhang mit erblichen Defekten der Thrombozytenadhäsion wie dem Bernard-Soulier-Syndrom und werden umfassend im Kontext von Blutungsneigungen und thrombotischem Risiko untersucht. Da CD42b weitgehend auf Megakaryozyten und Thrombozyten beschränkt ist, dient es als nützlicher Marker und funktioneller Knotenpunkt zur Untersuchung der Thrombozytenbiogenese und hämostatischer Signalwege.
CD42b Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen GP1BA-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CD42b Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des GP1BA-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der GP1BA-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CD42b-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native GP1BA-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CD42b-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CD42b-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem GP1BA-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.