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caspase-11 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419462-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-11 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419462-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Maus-Casp4 kodiert Caspase-11, eine entzündungsfördernde Cysteinprotease, die als zytosolischer Sensor für Lipopolysaccharid fungiert und ein zentraler Initiator des nichtkanonischen Inflammasom-Signalwegs ist. Nach Aktivierung spaltet Caspase-11 Gasdermin D, löst dadurch pyroptotischen Zelltod aus und fördert über Crosstalk mit kanonischen Inflammasom-Komponenten die Reifung der Signalübertragung entzündlicher Zytokine. Diese Achse verknüpft die angeborene Immunerkennung mit Membranpermeabilisierung, der Freisetzung von Alarminen und nachgeschalteten, NF-κB-gekoppelten Transkriptionsprogrammen. Eine fehlregulierte Caspase-11-Aktivität wird häufig genutzt, um Mechanismen von Endotoxämie, entzündlicher Gewebeschädigung und Wirt–Pathogen-Interaktionen in Makrophagen und anderen myeloischen Zelllinien zu modellieren.
caspase-11 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Casp4-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Casp4 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Casp4-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Casp4-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.