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α1B-AR Double Nickase Plasmid (m) | sc-419020-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
α1B-AR Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419020-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Adra1b kodiert den murinen α1B-Adrenozeptor (α1B-AR), einen G‑Protein‑gekoppelten Rezeptor für Katecholamine, der hauptsächlich an Gq/11 koppelt und dadurch die Phospholipase Cβ aktiviert. Dies steigert die IP3/DAG-Signalübertragung, die Mobilisierung von intrazellulärem Ca2+ sowie die Aktivität der Proteinkinase C. Über diese Signalwege reguliert er den Tonus der glatten Gefäßmuskulatur, die kardiale und neuronale Erregbarkeit und die Modulation der Neurotransmitterfreisetzung und integriert sympathische Inputs mit MAPK/ERK- und anderen Kinasekaskaden. Die α1B-AR-Signalgebung beeinflusst zudem Transkriptionsprogramme, die mit Zellwachstum und Stressantworten verknüpft sind, und eine veränderte adrenerge Rezeptorfunktion wurde mit Phänotypen in Zusammenhang gebracht, die für Hypertonie, kardiales Remodeling und die neurobehaviorale Regulation relevant sind. Mausmodelle für Adra1b unterstützen daher mechanistische Studien der adrenergen Signalübertragung in kardiovaskulären und nervalen Kontexten.
α1B-AR Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Adra1b-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Adra1b abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Adra1b-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Adra1b-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.