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αENaC Double Nickase Plasmid (m) | sc-422825-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
αENaC Double Nickase Plasmid (m2) | sc-422825-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Scnn1a kodiert die Alpha-Untereinheit des epithelialen Natriumkanals der Maus (αENaC), eine zentrale, porenbildende Komponente von ENaC, die die amiloridempfindliche Na⁺-Absorption über Epithelien vermittelt. Der αENaC‑abhängige Natriumfluss trägt zum transepithelialen Ionentransport, zur osmotisch getriebenen Wasserbewegung und zur Regulation des Membranpotenzials in Niere, Atemwegen und anderen epithelialen Geweben bei. Die ENaC‑Aktivität wird streng durch proteolytische Prozessierung und ubiquitinabhängigen Umsatz kontrolliert, einschließlich der Modulation durch NEDD4L- und SGK1‑Signalwege als Reaktion auf Hormone wie Aldosteron. Eine Fehlregulation der ENaC‑Funktion ist mit veränderter Salz- und Flüssigkeitshomöostase assoziiert und wird häufig in Modellen zur Hydratation der Oberflächenflüssigkeit der Atemwege und zur renalen Natriumhandhabung untersucht.
αENaC Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Scnn1a-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Scnn1a abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Scnn1a-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Scnn1a-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.