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ZO-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423407-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen **Tjp1** kodiert das Tight-Junction-Gerüstprotein **ZO-1 (TJP1)**, ein Mitglied der Familie der membranassoziierten Guanylatkinasen, das Claudine und Occludin mit dem kortikalen Aktin-Zytoskelett verbindet, um die apiko-basolaterale Polarität und die parazelluläre Barrierefunktion zu organisieren. ZO-1 ist an Aufbau und Aufrechterhaltung von Tight Junctions beteiligt, integriert Signale aus der durch Rho-GTPasen regulierten Zytoskelettdynamik und der mechanotransduktiven Signalübertragung an Zellkontakten und kann kontaktabhängige Signalwege beeinflussen, die die epitheliale Organisation koordinieren. Eine veränderte Lokalisation oder Expression von ZO-1 wird häufig als Readout für die Integrität von Tight Junctions in Modellen epithelialer und endothelialer Barrierefunktionsstörungen verwendet. In Maus-Systemen ermöglicht die Perturbation von **Tjp1** mechanistische Studien zu Permeabilität, entzündungsassoziiertem Barriere-Remodeling und Entwicklungsprozessen, die eine präzise junctionale Architektur erfordern.
ZO-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Tjp1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Tjp1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Tjp1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Tjp1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.