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USP18 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-423988-ACT | 20 µg | $397.00 |
Usp18 kodiert die ubiquitinspezifische Peptidase 18 (USP18), eine interferoninduzierbare Isopeptidase, die ISG15 von konjugierten Proteinen entfernt und als zentraler negativer Regulator der Typ‑I‑Interferon-Signalübertragung wirkt. Durch die Modulation der ISGylierungsdynamik und die Abschwächung der JAK–STAT-Signalwegaktivität über Interaktionen mit dem Interferonrezeptorkomplex prägt USP18 die angeborene Immunaktivierung, antivirale Antworten sowie entzündungsassoziierte Transkriptionsprogramme. In Mausmodellen ist eine veränderte USP18-Aktivität mit einer fehlregulierten Expression interferonstimulierter Gene und einer gestörten Immunhomöostase verknüpft, was ihre Relevanz für Studien zur Infektionsbiologie, Autoimmunität und Signalübertragung im Tumor‑Immunmikromilieu unterstreicht.
USP18 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Usp18-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
USP18 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Usp18-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Usp18-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen USP18-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Usp18-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von USP18-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des USP18-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Usp18-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.