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TRPM8 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401744-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TRPM8 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401744-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
TRPM8 kodiert den Transient-Receptor-Potential-Melastatin-8-(TRPM8-)Kanal, einen Ca²⁺-permeablen, kälte- und mentholempfindlichen Ionenkanal, der thermische und chemische Reize in eine Depolarisation der Membran und nachgeschaltete Kalzium-Signalkaskaden übersetzt. Die TRPM8-Aktivität beeinflusst die neuronale Erregbarkeit, die sensorische Reiztransduktion sowie kalziumabhängige Prozesse einschließlich Kinase-Signalwegen und transkriptioneller Antworten. In nicht-neuronalen Kontexten wird TRPM8 mit der Regulation von Zellproliferation, Migration und Stress-Signalgebung über Ionenfluss-gekoppelte Signalwege in Verbindung gebracht. Eine fehlregulierte TRPM8-Expression oder -Funktion wurde mit veränderter Nozizeption assoziiert und im Zusammenhang mit Tumorbiologie und inflammatorischer Signalgebung als Modulator der zellulären Kalziumhomöostase untersucht.
TRPM8 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TRPM8-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TRPM8 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TRPM8-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TRPM8-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.