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TGF beta Receptor 2/TGFBR2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400144-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TGF beta Receptor 2/TGFBR2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400144-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
TGFBR2 kodiert den Transforming-Growth-Factor-β-Rezeptor 2 (TGF-βR2), eine transmembrane Serin/Threonin-Kinase, die TGF-β-Liganden bindet und durch Phosphorylierung von TGFBR1 die kanonische SMAD2/3-Signalübertragung initiiert, sowie Crosstalk mit MAPK-, PI3K/AKT- und Rho-Familien-Signalwegen vermittelt. Über diese Netzwerke reguliert TGF-βR2 die epithelial–mesenchymale Transition, die Zellzykluskontrolle, die Immunmodulation und die Homöostase der extrazellulären Matrix und prägt damit Gewebeentwicklung und Wundheilung. Eine veränderte Funktion oder Expression von TGFBR2 stört die Signaltreue des Signalwegs und ist mit fehlregulierten Fibroseprogrammen und onkogenen Prozessen assoziiert, einschließlich Veränderungen der Wachstumshemmung, der Invasion und der Signalübertragung in der Tumormikroumgebung. Da die TGF-β-Signalgebung stark kontextabhängig ist, wird TGFBR2 häufig untersucht, um zelltypspezifische Transkriptionsantworten und die Rückkopplungskontrolle innerhalb von Zytokin- und Stressantwort-Schaltkreisen zu analysieren.
TGF beta Receptor 2/TGFBR2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TGFBR2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TGFBR2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TGFBR2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TGFBR2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.