Plasmide CRISPR d'Activation (h) Septin 4: sc-402288-ACT

Le gène humain **SEPT4** code la septine 4, une protéine d’échafaudage du cytosquelette se liant au GTP, qui s’assemble en filaments hétéro-oligomériques et en structures en forme d’anneau afin d’organiser des domaines membranaires. La septine 4 contribue à la cytocinèse, à la maturation du corps intermédiaire (midbody), au trafic vésiculaire et à l’établissement de barrières de diffusion en se coordonnant avec l’actine, les microtubules et les régulateurs associés de la polarité cellulaire. Par ces fonctions, **SEPT4** aide à contrôler la fidélité de la division cellulaire et les programmes de remodelage du cytosquelette qui influencent l’homéostasie neuronale et épithéliale. Une organisation des septines dérégulée ou une expression anormale de **SEPT4** a été associée dans la littérature à des processus neurodégénératifs, à une altération de la signalisation de l’apoptose et à des changements liés au cancer affectant la prolifération et la migration, ce qui étaye son utilisation comme nœud mécanistique dans la recherche sur le cytosquelette et le cycle cellulaire.

Septin 4 Le plasmide d'activation CRISPR (h) offre une approche ciblée et non destructive pour réguler à la hausse l'expression endogène de SEPT4 sans modifier la séquence d'ADN sous-jacente.

Septin 4 Le plasmide d'activation CRISPR (h) est un système SAM (synergistic activation mediator) à trois plasmides conçu pour une régulation à la hausse hautement efficace et spécifique du locus SEPT4 dans des lignées cellulaires humaines. Le système s'articule autour d'une Cas9 catalytiquement inactive (dCas9) portant deux mutations inactivantes (D10A et N863A) qui éliminent l'activité nucléase tout en préservant la liaison à l'ADN. Cette dCas9 est fusionnée à VP64, un puissant activateur transcriptionnel, et est co-exprimée avec un gène de résistance à la blasticidine pour la sélection. Le deuxième plasmide code pour la protéine de fusion MS2-p65-HSF1, un complexe activateur secondaire qui agit de concert avec dCas9-VP64, ainsi qu'un gène de résistance à l'hygromycine. Le troisième plasmide code pour un ARN guide (sgRNA) de 20 nt spécifique de la cible, fusionné à deux aptamères d'ARN MS2 qui recrutent le complexe MS2-p65-HSF1 vers le site d'activation, accompagné d'un gène de résistance à la puromycine. Les trois plasmides sont délivrés dans un rapport massique de 1:1:1 pour une expression équilibrée de tous les composants du système.

Une fois assemblé au locus cible, le complexe SAM se lie à environ 200 pb en amont du site de départ de la transcription SEPT4, où VP64, p65 et HSF1 agissent de concert pour recruter la machinerie transcriptionnelle et induire une régulation à la hausse de l'expression endogène de Septin 4. Contrairement à Cas9, qui possède une activité nucléase, dCas9 n'introduit pas de cassures double brin ni ne modifie la séquence génomique, préservant ainsi le locus SEPT4 natif et permettant l'étude des réponses transcriptionnelles dépendantes de Septin 4 au niveau du locus endogène, ce qui en fait un outil précieux pour les études fonctionnelles, l'identification de gènes cibles et la modélisation de la restauration de la voie Septin 4 dans les cellules tumorales présentant une expression de SEPT4 silencée ou réduite.

Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.