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SARA CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403648-ACT | 20 µg | $397.00 |
ZFYVE9 kodiert SARA (Smad Anchor for Receptor Activation), ein endosomales Gerüstprotein mit FYVE-Domäne, das an Phosphatidylinositol-3-phosphat bindet und trafficking-abhängige Signaltransduktion koordiniert. SARA rekrutiert SMAD2/3 an aktivierte TGF‑β‑Rezeptoren, fördert die SMAD-Phosphorylierung und nachgeschaltete Transkriptionsprogramme, die epithelial-mesenchymale Transition, Umbau der extrazellulären Matrix und Immunmodulation regulieren. Über seine Rolle in der endosomenassoziierten TGF‑β/SMAD-Signalgebung und das Crosstalk mit PI3K-abhängiger Membrandynamik trägt SARA dazu bei, Zellschicksalsentscheidungen und die Gewebehomöostase zu formen. Eine Fehlregulation von Komponenten des TGF‑β‑Signalwegs, einschließlich veränderter SMAD-Rekrutierung und Signalamplitude, wird mit Fibrose, Krebsprogression und Entwicklungsstörungen in Verbindung gebracht, was ZFYVE9 als mechanistischen Knotenpunkt für signalwegfokussierte Forschung stützt.
SARA Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ZFYVE9-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
SARA Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ZFYVE9-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ZFYVE9-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen SARA-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ZFYVE9-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von SARA-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des SARA-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ZFYVE9-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.