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RGS17 Double Nickase Plasmid (h) | sc-416360-NIC | 20 µg | $410.00 |
RGS17 (Regulator der G‑Protein-Signalübertragung 17) ist ein Mitglied der RGS-Familie, das die GTP-Hydrolyse an aktivierten Gα‑Untereinheiten beschleunigt und dadurch die Signalübertragung nachgeschalteter G‑Protein‑gekoppelter Rezeptoren (GPCR) abschwächt. Indem RGS17 GPCR‑getriebene Second‑Messenger‑Signalwege, darunter cAMP/PKA und damit verbundene MAPK‑gekoppelte Outputs, begrenzt, trägt es dazu bei, Amplitude und Dauer rezeptorinduzierter Antworten zu formen, die Proliferation, Migration und Stresssignalgebung beeinflussen. Eine fehlregulierte RGS17‑Expression wurde in mehreren Krebs-Kontexten mit veränderter onkogener Signalübertragung und verändertem Tumorzellverhalten in Verbindung gebracht; zudem ist RGS17 auch für Untersuchungen neuronaler und neuropsychiatrischer Signalwege relevant, in denen GPCR‑Signale eine wichtige Rolle spielen. Daher wird RGS17 häufig als molekularer Modulator von Signaltransduktionsnetzwerken und kontextabhängigen Phänotypen in humanen Zellmodellen untersucht.
RGS17 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RGS17-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RGS17 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RGS17-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RGS17-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.