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PP2Cα CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403960-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
PP2Cα CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-403960-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
PPM1A kodiert die Serin/Threonin-Phosphatase PP2Cα, ein Mg²⁺/Mn²⁺-abhängiges Mitglied der PP2C-Familie, das stressaktivierte Kinase-Signalwege ausbalanciert, indem es zentrale Komponenten dieser Wege dephosphoryliert. PP2Cα moduliert zelluläre Antworten auf genotoxische und entzündliche Reize; beschrieben sind u. a. Funktionen bei der Regulation von MAPK-Kaskaden, NF-κB-gekoppelten Signalausgängen und der Kontrolle von Zellzyklus-Checkpoints. Durch die Feinabstimmung phosphorylierungsabhängiger Signal-Schwellenwerte beeinflusst PPM1A Apoptose, Differenzierung und Programme der angeborenen Immunantwort. Eine dysregulierte PP2Cα-Aktivität oder -Expression wurde mit veränderter Stressadaptation und Signalphänotypen in verschiedenen krankheitsrelevanten Kontexten in Verbindung gebracht, darunter Krebsbiologie und immunbezogene Pathologien.
PP2Cα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PPM1A-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PP2Cα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PPM1A-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PPM1A-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PP2Cα-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PPM1A-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PP2Cα-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PP2Cα-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PPM1A-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.