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PP2A-Cα CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400613-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
PP2A-Cα CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400613-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
PPP2CA kodiert die katalytische Cα-Untereinheit der Proteinphosphatase 2A (PP2A-Cα), einer wichtigen Serin/Threonin-Phosphatase, die heterotrimere Komplexe mit strukturellen A- und regulatorischen B-Untereinheiten bildet, um Substratspezifität und subzelluläre Lokalisation zu steuern. PP2A-Cα wirkt der Kinase-Signalgebung entgegen und reguliert so den Zellzyklus, DNA-Schadensantworten, die Zytoskelettdynamik und metabolische Programme über Signalwege wie MAPK/ERK, PI3K–AKT und Wnt/β-Catenin. Störungen der Zusammensetzung des PP2A-Holoenzyms oder seiner katalytischen Aktivität werden mit fehlregulierten Phosphorylierungsnetzwerken in der Krebsbiologie und mit neurodegenerationsbezogenen Prozessen in Verbindung gebracht. PPP2CA wird daher breit als zentraler Regulator der Phosphorylierungs-Homöostase und der Signaltreue untersucht.
PP2A-Cα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PPP2CA-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PP2A-Cα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PPP2CA-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PPP2CA-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PP2A-Cα-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PPP2CA-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PP2A-Cα-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PP2A-Cα-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PPP2CA-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.