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PAR-4 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401719-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
PAR-4 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401719-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
F2RL3 kodiert den proteaseaktivierten Rezeptor 4 (PAR-4), einen thrombinresponsiven GPCR, der durch proteolytische Spaltung aktiviert wird, wobei ein „tethered ligand“ (gebundener Ligand) freigelegt wird und dadurch eine Signalübertragung über Gq/11 und G12/13 initiiert. Die Aktivierung von PAR-4 fördert eine phospholipase‑C‑abhängige Mobilisierung von Calcium, die Aktivierung von PKC sowie ein RhoA‑vermitteltes Zytoskelett‑Remodeling und greift in MAPK/ERK‑Signalwege ein, um Thrombozytenaktivierung, Granulasekretion und die Stabilisierung von Thromben zu regulieren. Über die Hämostase hinaus trägt die F2RL3/PAR-4‑Aktivität zu inflammatorischer Signalgebung in vaskulären und immunologischen Kontexten bei und wurde im Rahmen der kardiometabolischen und vaskulären Krankheitsbiologie untersucht, einschließlich atherosklerosebezogener Prozesse. Seine Expression und Signaldynamik bieten zudem einen mechanistischen Ansatzpunkt zur Untersuchung des Zusammenspiels von Proteasen und GPCRs sowie koagulationsgekoppelter Entzündungsprozesse in relevanten humanen Zellmodellen.
PAR-4 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des F2RL3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von F2RL3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die F2RL3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit F2RL3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.