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Nmi CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403503-ACT | 20 µg | $397.00 |
Humanes NMI (Nmi; N-Myc- und STAT-Interaktor) ist ein interferoninduzierbares Adapterprotein, das die transkriptionelle Signalübertragung durch direkte Interaktionen mit Mitgliedern der STAT-Familie und anderen nukleären Regulationsproteinen moduliert. Es trägt zu zytokinresponsiven Genexpressionsprogrammen bei, indem es die JAK/STAT-Aktivität mit einer umfassenderen Kontrolle von Zellproliferation, Differenzierung und Stressantworten verknüpft. NMI wurde in Kontexten untersucht, in denen inflammatorische Signalgebung mit onkogenen Netzwerken zusammenwirkt, darunter MYC-assoziierte transkriptionelle Regulation und Signalwege, die mit der epithelial–mesenchymalen Transition (EMT) verbunden sind. Veränderte NMI-Expression oder Signalpartnerschaften wurden in mehreren krankheitsrelevanten Modellen beschrieben, was NMI nützlich macht, um immunregulierte Transkriptionsschaltkreise und Zustandsübergänge von Krebszellen zu analysieren.
Nmi Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen NMI-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Nmi Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des NMI-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der NMI-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Nmi-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native NMI-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Nmi-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Nmi-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem NMI-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.