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nm23-H1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-421911-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
nm23-H1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-421911-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Nme1 kodiert nm23-H1, eine Nukleosiddiphosphat-Kinase, die dazu beiträgt, die zellulären NTP-Pools im Gleichgewicht zu halten, und energieabhängige Prozesse wie Zytoskelettdynamik, Vesikeltransport und Nukleotidstoffwechsel unterstützt. In Mauszel len wurde nm23-H1 mit der Regulation von Programmen der Zellmotilität und -adhäsion in Verbindung gebracht und kann Signalnetzwerke beeinflussen, die mit Stressantworten und Differenzierung assoziiert sind. Eine veränderte nm23-H1-Aktivität wird häufig im Kontext der Tumorbiologie untersucht; dabei wurden in unterschiedlichen Modellsystemen Veränderungen des metastatischen Verhaltens und des invasiven Potenzials beschrieben. Diese Eigenschaften machen Nme1 zu einem nützlichen Lokus, um Signalwege zu untersuchen, die die Nukleotidhomöostase mit Migration und Wachstumskontrolle verknüpfen.
nm23-H1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Nme1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Nme1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Nme1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Nme1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.