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NaDC-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-422975-NIC | 20 µg | $410.00 |
Slc13a2 kodiert den natriumabhängigen Dicarboxylat-Kotransporter NaDC-1, einen Transporter der apikalen Membran, der den Na+-Gradienten mit der Aufnahme von Zwischenprodukten des Krebs-Zyklus wie Citrat, Succinat und α-Ketoglutarat koppelt. Im proximalen Tubulus der Mausniere trägt NaDC-1 zur Citrat-Rückresorption bei und beeinflusst dadurch den Citratspiegel im Urin, die Säure-Basen-Homöostase und den Umgang mit Calciumsalzen. Durch die Regulation der intrazellulären Verfügbarkeit von Dicarboxylaten kann NaDC-1 die mitochondriale Anaplerose und den mit dem TCA-Zyklus verbundenen Stoffwechselnetzwerk-Fluss beeinflussen. Eine veränderte Slc13a2/NaDC-1-Funktion wurde mit nierenschonrelevanten Phänotypen, der Physiologie des renalen tubulären Transports sowie metabolischen Anpassungen in der Nephrologie und in Modellen der Systemmetabolik in Verbindung gebracht.
NaDC-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Slc13a2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Slc13a2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Slc13a2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Slc13a2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.