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IP3R-I Double Nickase Plasmid (h) | sc-400986-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
IP3R-I Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400986-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ITPR1 kodiert den Inositol-1,4,5-trisphosphat-Rezeptor Typ 1 (IP3R‑I), einen intrazellulären Ca²⁺-Freisetzungskanal, der überwiegend im endoplasmatischen Retikulum lokalisiert ist und von der Phospholipase C erzeugtes IP3 mit schnellen zytosolischen Calciumtransienten koppelt. Über die regulierte Mobilisierung von Ca²⁺ prägt IP3R‑I die Kopplung von Erregung und Transkription, die mitochondriale Bioenergetik, Autophagie sowie Ca²⁺-abhängige Kinase-/Phosphatase-Signalwege einschließlich CaMK- und Calcineurin‑NFAT‑Signalwegen. In humanen Zellen integriert die ITPR1-Aktivität Signale aus GPCRs und Rezeptor-Tyrosinkinasen, um Sekretion, Kontraktilität und die Dynamik neuronaler Signalübertragung zu steuern. Veränderte IP3R‑I-Signalisierung und Varianten in ITPR1 werden mit neurologischen Funktionsstörungen und weiter gefassten Erkrankungen der Ca²⁺-Homöostase in Verbindung gebracht, wodurch dieser Genort ein häufiges Ziel mechanistischer Studien zu intrazellulären Calcium-Signalwegen ist.
IP3R-I Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ITPR1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ITPR1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ITPR1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ITPR1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.