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H+/K+ ATPase β CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403057-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
H+/K+ ATPase β CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-403057-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
ATP4B kodiert die β‑Untereinheit der gastralen H+/K+-ATPase, einer heterodimeren P‑Typ‑ATPase, die für den Zusammenbau, die Membranadressierung und die funktionelle Stabilität der Protonenpumpe in Belegzellen erforderlich ist. Durch die Unterstützung der H+-Sekretion im Austausch gegen K+ trägt ATP4B zur Ansäuerung des Magens, zur ionischen Homöostase des Epithels und zu pH‑abhängigen Verdauungsprozessen bei. Die Regulation der ATP4B-Expression greift in Signalwege ein, die die epitheliale Differenzierung, den Membrantransport (Trafficking) und die Organisation der sekretorischen Kanälchen steuern. Veränderte Expression und immunologische Erkennung von Komponenten der gastralen H+/K+-ATPase wurden mit Funktionsstörungen der Magenschleimhaut und Phänotypen einer autoimmunassoziierten Gastritis in Verbindung gebracht, was ATP4B zu einem nützlichen Marker und mechanistischen Knotenpunkt in der Magenbiologieforschung macht.
H+/K+ ATPase β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ATP4B-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
H+/K+ ATPase β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ATP4B-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ATP4B-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen H+/K+ ATPase β-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ATP4B-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von H+/K+ ATPase β-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des H+/K+ ATPase β-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ATP4B-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.