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HAS3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401531-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
HAS3 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401531-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Hyaluronan-Synthase 3 (HAS3) ist eine membranassoziierte Glykosyltransferase, die die Synthese von Hyaluronan katalysiert, einem wesentlichen Glykosaminoglykan-Bestandteil der extrazellulären Matrix. Durch die Regulation der perizellulären Hyaluronanmenge beeinflusst HAS3 Zelladhäsion, Migration, Proliferation und inflammatorische Signalwege, einschließlich Interaktionen mit CD44 und RHAMM, die den Umbau der extrazellulären Matrix mit der Zytoskelettdynamik koppeln. Die HAS3-Aktivität trägt zur Gewebehydratation und Barrierefunktion bei und kann die Wundheilung sowie das stromal–epitheliale Crosstalk modulieren. Veränderte HAS3-Expression und ein gestörter Hyaluronanstoffwechsel wurden mit Fibrose, chronischer Entzündung und dem Remodeling des Tumormikromilieus in Verbindung gebracht, was HAS3 als Zielstruktur für mechanistische Studien zu extrazellulärmatrixgetriebenen Phänotypen nahelegt.
HAS3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des HAS3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von HAS3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die HAS3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit HAS3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.