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Gα i-3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400453-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Gα i-3 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400453-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GNAI3 kodiert die menschliche heterotrimere G‑Protein‑α‑Untereinheit Gαi‑3, einen GDP/GTP‑regulierten molekularen Schalter, der viele GPCRs mit der Hemmung der Adenylylcyclase und einer verminderten cAMP‑Signalübertragung koppelt. Über nachgeschaltete Effekte auf die PKA‑Aktivität, Ionenkanäle sowie MAPK/ERK‑ und PI3K‑assoziierte Netzwerke trägt Gαi‑3 dazu bei, Chemotaxis, Sekretion und Entscheidungen über Zellwachstum als Reaktion auf extrazelluläre Signale zu koordinieren. Außerdem ist es an Programmen der Membrantraktion und Zellpolarität beteiligt, indem es Vesikeltransport und zytoskelettale Dynamik reguliert. Eine veränderte GPCR–Gαi‑Signalgebung wurde in krankheitsrelevanten zellulären Kontexten mit dysreguliertem proliferativem und migratorischem Verhalten in Verbindung gebracht und stützt mechanistische Studien zur Umverdrahtung von Signalwegen.
Gα i-3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GNAI3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GNAI3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GNAI3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GNAI3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.