Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
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GRK 2 Double Nickase Plasmid (m): sc-431016-NIC
- Zielspezies: mouse
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- Das GRK 2 Double Nickase Plasmid (m) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
- gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
- Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
- GRK 2 Double-Nickase-Plasmid (m) und GRK 2 Double-Nickase-Plasmid (m2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf Grk2 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
- Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: GRK 2: sc-13143
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
GRK 2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-431016-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
GRK 2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-431016-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Mouse Grk2 kodiert die G‑Protein‑gekoppelte Rezeptorkinase 2 (GRK2), eine Serin/Threonin‑Kinase, die aktivierte GPCRs phosphoryliert und dadurch die Rekrutierung von β‑Arrestin, die Desensibilisierung des Rezeptors sowie den endozytotischen Transport fördert. Über die GPCR‑Regulation hinaus ist GRK2 mit Signalnetzwerken wie den MAPK/ERK‑ und PI3K/AKT‑Signalwegen verknüpft und kann über Interaktionen mit Adapterproteinen die Zytoskelettdynamik und die Zellmigration beeinflussen. Die GRK2‑Aktivität prägt die Antworten auf Katecholamine und Chemokine und verbindet sie damit mit der Modulation entzündlicher Signalgebung und stressresponsiver Signalwege. Eine fehlregulierte GRK2‑Expression oder -Signalgebung wurde in der Literatur mit veränderter kardiovaskulärer und metabolischer Signalübertragung sowie mit Änderungen der Tumorzellmotilität in Zusammenhang gebracht, was ihren Einsatz als mechanistisches Ziel in pfadfokussierten Forschungsmodellen unterstützt.
GRK 2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Grk2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Grk2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Grk2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Grk2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.