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FIH-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-435640-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
FIH-1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-435640-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen Hif1an kodiert den „factor inhibiting HIF-1“ (FIH-1), eine Asparaginylhydroxylase, die HIF-1α und verwandte Substrate sauerstoffabhängig modifiziert und so hypoxieinduzierte Transkriptionsprogramme begrenzt. Durch die Hydroxylierung einer zentralen Asparaginrestes in der C-terminalen Transaktivierungsdomäne von HIF-1α schränkt FIH-1 die Rekrutierung von Koaktivatoren ein und moduliert die Expression von Genen, die an Angiogenese, glykolytischem Stoffwechsel, Erythropoese und der zellulären Anpassung an niedrige Sauerstoffkonzentrationen beteiligt sind. Über die HIF-Signalgebung hinaus wird FIH-1 mit einer breiteren Regulation von Proteininteraktionen und Stressantworten in Verbindung gebracht, unter anderem durch die Hydroxylierung von Proteinen mit Ankyrin-Repeats. Eine fehlregulierte Kontrolle des HIF-Signalwegs ist relevant für die Tumorhypoxie-Biologie, inflammatorische Signalgebung, metabolisches Remodeling und ischämiebedingte Gewebereaktionen, wodurch Hif1an einen nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Studien darstellt.
FIH-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Hif1an-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Hif1an abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Hif1an-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Hif1an-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.