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E2F-3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400934-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
E2F-3 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400934-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
E2F3 kodiert den menschlichen Transkriptionsfaktor E2F-3, einen zentralen Regulator der Zellzyklusprogression, der die Expression von Genen steuert, die für den G1/S-Übergang, die DNA-Replikation und den Eintritt in die S‑Phase erforderlich sind. Die Aktivität von E2F-3 wird durch die RB/E2F-Achse geprägt, die mitogene Signale mit der Checkpoint-Kontrolle verknüpft, um Proliferation und Genomstabilität zu koordinieren. Über Transkriptionsprogramme, die mit Cyclinen, Faktoren der Replikationslizenzierung und Komponenten der DNA-Reparatur verbunden sind, beeinflusst E2F-3 unter Stressbedingungen zelluläres Wachstum, Seneszenz und Apoptose. Eine Fehlregulation der E2F3-Expression oder der übergeordneten Kontrolle durch den RB-Signalweg ist häufig mit aberranten Proliferationsphänotypen assoziiert und wird im Kontext onkogener Signalgebung sowie der Störung von Tumorsuppressor-Netzwerken untersucht.
E2F-3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des E2F3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von E2F3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die E2F3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit E2F3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.