Date published: 2026-7-14

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cathepsin S Double Nickase Plasmid (h): sc-417407-NIC

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Das cathepsin S Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
  • gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
  • Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
  • cathepsin S Double-Nickase-Plasmid (h) und cathepsin S Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf CTSS abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: cathepsin S: sc-271619
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    cathepsin S Double Nickase Plasmid (h)

    sc-417407-NIC
    20 µg
    $410.00

    cathepsin S Double Nickase Plasmid (h2)

    sc-417407-NIC-2
    20 µg
    $410.00

    CTSS kodiert Cathepsin S, eine lysosomale Cysteinprotease mit ausgeprägter Aktivität in antigenpräsentierenden Zellen, wo sie die invariante Kette (CD74) spaltet und dadurch die Peptidbeladung von MHC-Klasse-II-Molekülen sowie die Immunüberwachung ermöglicht. Über den endolysosomalen Proteinumsatz hinaus trägt Cathepsin S zum Umbau der extrazellulären Matrix bei und moduliert entzündliche Signalwege durch proteolytische Verarbeitung von Immunmediatoren. Eine fehlregulierte CTSS-Expression oder -Aktivität wurde mit veränderter Antigenpräsentation, chronisch entzündlichen Mikroumgebungen und tumorassoziierten Immuninteraktionen in Verbindung gebracht und macht CTSS zu einem geeigneten Ansatzpunkt für die Untersuchung der Immunregulation und proteaseabhängiger Signalwege. CTSS wird außerdem im Kontext von Neuroinflammation und vaskulären Pathologien untersucht, bei denen abweichende Proteolyse die Gewebehomöostase beeinflussen kann.

    cathepsin S Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CTSS-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CTSS abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CTSS-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.

    Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CTSS-Störung.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.