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casein kinase IIα Double Nickase Plasmid (h) | sc-418515-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
casein kinase IIα Double Nickase Plasmid (h2) | sc-418515-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CSNK2A1 kodiert die katalytische Alpha-Untereinheit der Caseinkinase II (CK2α), einer konstitutiv aktiven Serin/Threonin-Kinase, die eine Vielzahl von Substraten phosphoryliert, die an Signaltransduktion, Transkriptionskontrolle und Proteinabbau beteiligt sind. CK2α wirkt in Signalwegen, die den Zellzyklusfortschritt, DNA-Schadensantworten und Stresssignalgebung steuern, und moduliert chromatinassoziierte Prozesse durch Phosphorylierung nukleärer Faktoren. Eine Fehlregulation der CSNK2A1/CK2-Aktivität wurde mit veränderter Wachstumssignalgebung und aberranten Phosphorylierungsnetzwerken in verschiedenen Krankheitskontexten in Verbindung gebracht, darunter Krebs und neurologische Entwicklungsstörungen. Als zentraler Knotenpunkt der Phosphoregulation wird CK2α häufig untersucht, um kinaseabhängige Schaltkreise zu kartieren und kontextspezifische Abhängigkeiten in menschlichen Zellen zu definieren.
casein kinase IIα Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CSNK2A1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CSNK2A1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CSNK2A1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CSNK2A1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.