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BLOS1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-406825-ACT | 20 µg | $397.00 |
BLOC1S1 kodiert BLOS1, eine zentrale Untereinheit des „Biogenesis of Lysosome-related Organelles Complex-1“ (BLOC-1), der die endosomale Sortierung und den für eine normale Funktion lysosomenverwandter Organellen erforderlichen Frachttransport unterstützt. Über seine Rolle bei der Vesikelreifung und der Lieferung von Membranproteinen trägt BLOS1 zu zellulären Prozessen wie Proteinumsatz, Organellenhomöostase und regulierter Sekretion bei. Störungen von BLOC-1-Komponenten wurden mit Defekten in intrazellulären Transportwegen in Verbindung gebracht, die für neuroentwicklungsbezogene und neuropsychiatrische Phänotypen relevant sind, sowie mit Veränderungen der Immun- und Pigmentorganellenbiologie. Daher wird BLOC1S1 häufig in Modellen endolysosomaler Dysfunktion und der signalwegbezogenen Regulation des intrazellulären Transports untersucht.
BLOS1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen BLOC1S1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
BLOS1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des BLOC1S1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der BLOC1S1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen BLOS1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native BLOC1S1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von BLOS1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des BLOS1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem BLOC1S1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.