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Bcr Double Nickase Plasmid (h) | sc-401514-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Bcr Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401514-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
BCR kodiert Bcr, ein Multidomänenprotein mit Serin/Threonin-Kinase- und regulatorischen Aktivitäten gegenüber Rho-Familien-GTPasen, das die Umgestaltung des Zytoskeletts und die intrazelluläre Signalübertragung koordiniert. Bcr fungiert als GTPase-aktivierendes Protein (GAP) für RAC1 und verwandte kleine GTPasen und verknüpft damit upstream Signale mit Aktindynamik, Adhäsion und Programmen der Zellmotilität. Es trägt zudem zu Signalnetzwerken bei, die über Interaktionen mit phosphorylierungsabhängigen Signalwegen Proliferation und Stressantworten modulieren. Eine veränderte BCR-Funktion ist in hämatologischen Krankheitskontexten biologisch relevant, am deutlichsten durch onkogene Fusionsereignisse, die die Tyrosinkinase-Signalgebung und nachgeschaltete transkriptionelle Programme fehlregulieren.
Bcr Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des BCR-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von BCR abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die BCR-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit BCR-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.