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BBS1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-410535-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
BBS1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-410535-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
BBS1 kodiert eine zentrale Untereinheit des BBSoms, eines Multiproteinkomplexes, der mit der IFT-Maschinerie zusammenarbeitet, um den Transport von Membranproteinen in Zilien sowie die Signalkompetenz primärer Zilien zu regulieren. Über die Kontrolle von Rezeptor-Lokalisierung und -Umsatz beeinflusst BBS1 zilienabhängige Signalwege, darunter Hedgehog- und GPCR-vermittelte Signalübertragung, mit nachgeschalteten Effekten auf die zelluläre Homöostase, die neuroendokrine Regulation und die Entwicklung. Eine Störung von BBS1 beeinträchtigt die Ziliogenese und die Sortierung von Frachtproteinen, was zu veränderter Signaltransduktion und Defekten in der Zusammensetzung der Zilien führt. Varianten im menschlichen BBS1 sind stark mit dem Bardet–Biedl-Syndrom und verwandten Ziliopathien assoziiert, was seine breite Bedeutung für die Untersuchung zilienbezogener Krankheitsmechanismen unterstreicht.
BBS1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des BBS1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von BBS1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die BBS1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit BBS1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.