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Plasmide Double Nickase (h) Angiomotin-L2 | sc-402027-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Plasmide Double Nickase (h2) Angiomotin-L2 | sc-402027-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
AMOTL2 code pour angiomotin-like 2, une protéine d’échafaudage qui s’associe aux complexes des jonctions serrées et du cytosquelette d’actine afin de réguler la polarité épithéliale, la forme cellulaire et la migration dirigée. Angiomotin-L2 participe au contrôle de la voie Hippo en modulant la localisation de YAP/TAZ et les sorties transcriptionnelles, influençant ainsi l’inhibition de contact et la mécanotransduction. Grâce à ces fonctions jonctionnelles et de signalisation, AMOTL2 est pertinente pour les études du remodelage tissulaire, du comportement angiogénique et des phénotypes associés à l’invasion, fréquemment examinés en cancérologie et en biologie vasculaire. Une activité d’AMOTL2 dérégulée a été associée à des altérations de la dynamique d’adhérence cellulaire et à une signalisation anormale du contrôle de la croissance, ce qui en fait une cible utile pour l’analyse des voies dans des modèles cellulaires pertinents pour les maladies.
Angiomotin-L2 Le plasmide double nickase (h) se compose d'une paire de plasmides appariés, conçus pour une édition hautement spécifique du locus AMOTL2 dans les lignées cellulaires human. Chaque plasmide exprime une nickase Cas9 D10A et un sgRNA distinct ciblant des brins d'ADN opposés au sein de AMOTL2. Lorsqu'elles sont dirigées vers des sites adjacents sur des brins d'ADN opposés, les deux nickases génèrent des cassures simple brin décalées qui, ensemble, produisent une cassure double brin décalée, nécessitant une activité coordonnée sur la cible de la part des deux guides. La cassure d'ADN qui en résulte est résolue par les voies de réparation cellulaires endogènes, le plus souvent par jonction non homologue (NHEJ), ce qui conduit à des insertions ou des délétions qui perturbent la fonction de AMOTL2. En nécessitant l'engagement de deux ARNsg au locus cible, l'approche par double nick améliore la spécificité de l'édition et offre une stratégie CRISPR complémentaire pour les applications où un contrôle supplémentaire de la précision du ciblage est souhaité.
Afin de faciliter l'identification efficace des cellules éditées, un plasmide code pour la GFP permettant la visualisation par fluorescence des populations transfectées, tandis que le plasmide compagnon porte un gène de résistance à la puromycine pour la sélection antibiotique. Ensemble, ces caractéristiques favorisent l'enrichissement efficace des populations co-transfectées et simplifient la validation des clones présentant une perturbation de AMOTL2.
Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.