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Akt2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419072-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Akt2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419072-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Akt2 kodiert die Serin/Threonin-Kinase AKT2, einen zentralen Effektor der PI3K-Signalübertragung, der Signale von Wachstumsfaktoren und Insulinrezeptoren mit der nachgeschalteten Kontrolle von Glukoseaufnahme, Glykogensynthese, Lipidstoffwechsel und Zellüberleben verknüpft. In Mausgeweben beeinflusst die AKT2-Aktivität den Membrantransport von Glukosetransportern, mTORC1-regulierte anabole Programme sowie die phosphorylierungsabhängige Hemmung proapoptotischer Faktoren wie Transkriptionsfaktoren der FOXO-Familie. Eine dysregulierte AKT2-Signalgebung ist mit veränderter Insulinsensitivität und gestörter metabolischer Homöostase assoziiert; eine aberrante Aktivierung dieses Signalwegs wird häufig in Modellen zu Proliferation, Stressantworten und onkogener Signalgebung untersucht. Als Knotenpunkt, der Rezeptor-Tyrosinkinase-Signale mit Stoffwechsel- und Zellzyklus-Schaltkreisen integriert, wird Akt2 breit in Adipozyten, Hepatozyten, Myozyten und in verschiedensten Krebszellkontexten erforscht.
Akt2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Akt2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Akt2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Akt2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Akt2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.