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α-actinin-2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401186-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
α-actinin-2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401186-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ACTN2 kodiert α-Actinin-2, ein calciumunempfindliches, Aktin quervernetzendes Protein, das in quergestreifter Muskulatur an Z-Scheiben und Kostameren angereichert ist. Dort verankert es Aktinfilamente und organisiert die Architektur des Sarkomers. Durch Wechselwirkungen mit Titin, Integrinen, Ionenkanälen und Signaladapterproteinen trägt α-Actinin-2 zur Mechanotransduktion, zum Umbau des Zytoskeletts und zu Kraftübertragungswegen bei, die kontraktile Aktivität mit zellulären Antworten koppeln. Störungen von ACTN2 wurden mit erblichen Kardiomyopathien und myofibrillärer Desorganisation in Verbindung gebracht, was es zu einem zentralen Ansatzpunkt für die Untersuchung struktureller Stabilität und stressabhängiger Signalwege in Kardiomyozyten und Skelettmuskelfasern macht. Typische Forschungsanwendungen umfassen die Analyse von Z-Scheiben-Proteinnetzwerken, die Dynamik der Sarkomerassemblierung sowie Genotyp-Phänotyp-Beziehungen in humanen Krankheitsmodellen von Muskelerkrankungen.
α-actinin-2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ACTN2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ACTN2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ACTN2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ACTN2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.