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Vimentin Double Nickase Plasmid (m) | sc-423676-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Vimentin Double Nickase Plasmid (m2) | sc-423676-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Vim kodiert Vimentin, ein Intermediärfilamentprotein vom Typ III, das das Zytoskelettnetzwerk organisiert und dazu beiträgt, Zellform, mechanische Stabilität und die Positionierung von Organellen in mesenchymalen und motilen Zellzuständen aufrechtzuerhalten. Vimentin wird während Zellteilung, Migration und Adhäsion dynamisch umgebaut, interagiert mit Aktin und Mikrotubuli und verknüpft Signalwege, die an epithelial-mesenchymaler Transition (EMT), Wundheilung und entzündlichen Reaktionen beteiligt sind. In Mausmodellen sind veränderte Vimentinexpression oder eine gestörte Filamentorganisation mit Änderungen in der Migration von Immunzellen, fibroseassoziiertem Remodelling und metastasebezogenen Phänotypen verbunden, was Vim zu einem nützlichen Ansatzpunkt für die Untersuchung des Crosstalks zwischen Zytoskelett und Signalgebung macht. Seine breite Expression in stromalen und immunologischen Kompartimenten unterstützt zudem Untersuchungen zur Gewebearchitektur und zur Regulation durch das Mikromilieu.
Vimentin Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Vim-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Vim abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Vim-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Vim-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.