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SNAI 1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400244-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
SNAI 1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400244-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Humanes **SNAI1** kodiert **SNAI1**, einen Zinkfinger-Transkriptionsrepressor, der an E-Box-Motive bindet, um epitheliale Genprogramme – einschließlich **CDH1** – zu unterdrücken und die epithelial–mesenchymale Transition (EMT) zu fördern. Über Interaktionen mit Chromatin-Remodeling- und Korepressor-Komplexen formt SNAI1 Transkriptionsnetzwerke um, die Zellpolarität, Adhäsion, Migration und entwicklungsbezogene Linienentscheidungen steuern. Die SNAI1-Aktivität ist mit TGF-β/SMAD-, Wnt/β-Catenin-, Notch-, NF-κB- und Hypoxie-Signalwegen verknüpft und verbindet so Mikroumgebungsreize mit phänotypischer Plastizität. Eine fehlregulierte SNAI1-Expression wird häufig mit Tumorprogression, Invasions- und Metastasierungsphänotypen, fibroseassoziiertem Remodeling sowie veränderten stamzellähnlichen Programmen in Verbindung gebracht und ist damit ein relevantes Ziel für mechanistische Studien zu EMT und zellulären Zustandsübergängen.
SNAI 1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SNAI1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SNAI1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SNAI1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SNAI1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.