Plasmide CRISPR/Cas9 KO Siglec-10 (h): sc-417871

Présentation

SIGLEC10 code Siglec-10, une lectine de type immunoglobuline se liant à l’acide sialique, exprimée sur plusieurs sous-populations myéloïdes et lymphoïdes, qui fonctionne comme récepteur inhibiteur via le recrutement, médié par des motifs ITIM, de phosphatases telles que SHP-1/SHP-2. En reconnaissant des glycannes sialylés sur des ligands de l’hôte et en régulant la signalisation au voisinage immédiat du récepteur, Siglec-10 module l’activation de l’immunité innée, la production de cytokines inflammatoires et les programmes de phagocytose, en intégrant un contrôle de point de contrôle glyco-immunitaire aux voies situées en aval des récepteurs de reconnaissance de motifs et des récepteurs Fc. La signalisation de Siglec-10 interfère aussi avec des signaux « ne me mange pas », notamment via une suppression de l’activation des macrophages dépendante de CD24, reliant cet axe à des mécanismes d’échappement immunitaire et d’inflammation associée aux tumeurs. Des altérations de l’expression ou de la signalisation de SIGLEC10 ont été associées à une tolérance immunitaire dérégulée et à des états inflammatoires chroniques, ce qui justifie son étude en immuno-oncologie, en auto-immunité et dans les interactions hôte–pathogène.

Le Siglec-10 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) est un ensemble de plasmides conçus pour la disruption ciblée du gène SIGLEC10 dans les lignées cellulaires human. Chaque plasmide du pool co-exprime un sgRNA unique, ciblant un site distinct au sein du locus SIGLEC10, ainsi que la nucléase Cas9 de Streptococcus pyogenes, et code pour la GFP afin de permettre l'identification par fluorescence et l'enrichissement des cellules transfectées avec succès. Cette stratégie multi-guide augmente la probabilité d'induire des décalages de cadre ou des délétions produisant un knock-out fonctionnel, offrant ainsi une alternative plus robuste aux approches à guide unique. Les cassures double brin (DSB) induites à plusieurs sites sont résolues par jonction non homologue (NHEJ) ou, lorsqu'elles sont utilisées avec le modèle donneur HDR inclus, par réparation dirigée par homologie (HDR) à un site cible défini au sein du locus.

Lorsqu'il est utilisé en conjonction avec le donneur HDR exprimant la RFP, les fluorescences GFP et RFP peuvent être utilisées conjointement pour distinguer les populations de cellules transfectées de celles éditées, rationalisant ainsi les workflows de tri par cytométrie en flux et de sélection de clones.

Donneur de réparation dirigée par homologie (HDR) — Cassette de puromycine avec rapporteur RFP

Pour les applications nécessitant des clones knock-out confirmés et sélectionnables, le Siglec-10 plasmide HDR (h) comprend une construction donneuse HDR contenant une cassette de résistance à la puromycine (PuroR) et un rapporteur protéine fluorescente rouge (RFP), flanquée de bras d'homologie spécifiques à un site cible SIGLEC10 défini.
Lorsqu'il est co-transfecté avec le plasmide Siglec-10 CRISPR/Cas9 KO (h):

• La cassette PuroR-RFP s'intègre au site de coupure de Cas9 via HDR, perturbant le cadre de lecture ouvert SIGLEC10.
  La fluorescence RFP fournit un indicateur visuel immédiat de la réussite de l'intégration, permettant l'identification ou le tri par fluorescence des cellules éditées avant ou parallèlement à la sélection par la puromycine.
  Les cellules éditées avec succès sont confirmées par leur résistance à la puromycine, ce qui réduit considérablement la charge de criblage des clones.
  Cette stratégie de sélection est idéale pour générer des lignées cellulaires KO clonales stables destinées à des études fonctionnelles en aval, au criblage de médicaments ou au développement de modèles.

Système de suppression de la cassette Cre-lox

La construction donneuse HDR comporte des sites loxP flanquant la cassette de sélection PuroR-RFP afin de permettre une suppression propre du marqueur après confirmation du clone. L'expression transitoire de la recombinase Cre via le vecteur Cre inclus Cre Vector: sc-418923 excise la cassette, laissant un site loxP résiduel minimal au sein du locus SIGLEC10 et éliminant les effets de confusion potentiels sur les tests en aval.
Cette approche en deux étapes :

• Minimise la perturbation de l'architecture locale de la chromatine et des éléments régulateurs voisins
  Restaure un contexte génomique quasi-naturel au niveau du locus édité
  Permet la réutilisation de la stratégie de sélection à la puromycine dans la même lignée cellulaire pour des modifications supplémentaires

Caractéristiques principales

• gRNA ciblant le ou les exons SIGLEC10 essentiels à la fonction Siglec-10
  Co-expression de SpCas9 et de sgRNA à partir d'un seul plasmide pour une administration simplifiée
  Donneur HDR avec résistance à la puromycine pour une sélection positive des clones
  Cassette PuroR flanquée de loxP avec vecteur de recombinase Cre pour une suppression transparente du marqueur
  Fourni prêt à l'emploi pour une administration par transfection

Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.