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RCC1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402078-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
RCC1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402078-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
RCC1 kodiert den Regulator der Chromosomenkondensation 1, einen an Chromatin gebundenen Guanin-Nukleotid-Austauschfaktor, der Ran aktiviert, indem er den Austausch von GDP gegen GTP fördert. Der daraus resultierende RanGTP-Gradient koordiniert den nukleozytoplasmatischen Transport, den Spindelaufbau und die Neubildung der Kernhülle und verknüpft RCC1 damit mit der Zellzyklusprogression und der Genomstabilität. Die RCC1-Funktion ist in die Kontrolle des mitotischen Checkpoints und die Chromatindynamik eingebettet; Störungen können die Chromosomensegregation und DNA-Schadensantworten verändern. Eine Fehlregulation der RCC1–Ran-Signalgebung wurde mit proliferativen Phänotypen in Verbindung gebracht und wird häufig im Kontext der Krebsbiologie sowie von Signalwegen unter mitotischem Stress untersucht.
RCC1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RCC1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RCC1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RCC1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RCC1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.