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Pdcd-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-422150-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Pdcd-1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-422150-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Der programmierte Zelltod 1 (Pdcd1; PD‑1, Pdcd‑1) kodiert einen inhibitorischen Immunrezeptor, der vor allem auf aktivierten T‑Zellen, B‑Zellen und myeloiden Subpopulationen exprimiert wird, die Immunaktivierung dämpft und periphere Toleranz fördert. Nach Bindung an PD‑L1 (Cd274) oder PD‑L2 (Pdcd1lg2) rekrutiert PD‑1 SHP‑Phosphatasen, um die frühe TCR/CD28‑Signalübertragung abzuschwächen; dadurch werden die Aktivität der PI3K‑AKT‑ und RAS‑MAPK‑Signalwege reduziert und Zytokinproduktion, Proliferation sowie metabolische Umprogrammierung begrenzt. Diese Checkpoint‑Achse ist zentral für T‑Zell‑Erschöpfung und Differenzierungszustände bei chronischer Antigenexposition und prägt Keimzentrumsreaktionen sowie immunologische Fehlregulationen im Zusammenhang mit Autoimmunität. In Mausmodellen wird die Pdcd1‑Funktion breit in der Tumorimmunologie, bei chronischen Infektionen und in Mechanismen entzündlicher Erkrankungen untersucht, bei denen veränderte PD‑1‑Signalgebung die Immunhomöostase beeinflusst.
Pdcd-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Pdcd1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Pdcd1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Pdcd1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Pdcd1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.