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PARD6B CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401699-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
PARD6B CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-401699-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Das humane Gen PARD6B kodiert Par-6 beta, ein Polaritäts-Scaffold mit PDZ-Domäne, das zusammen mit PAR3 und atypischer PKC den PAR-Polaritätskomplex assembliert, um die apikal-basale Polarität zu etablieren und die Bildung von Tight Junctions zu koordinieren. Über Interaktionen mit kleinen GTPasen wie CDC42 und RAC1 trägt PARD6B zur Regulation der Zytoskelettdynamik, der orientierten Zellteilung und der epithelialen Morphogenese bei, mit nachgeschalteten Effekten auf Migration und Gewebearchitektur. Veränderte Polaritätssignalgebung unter Beteiligung von PARD6B wurde in krebsrelevanten Kontexten mit epithelialer Desorganisation und invasiven Phänotypen in Verbindung gebracht; außerdem wird es in Entwicklungsprozessen und der Barrierefunktion untersucht. Als Signal-Hub an Zell-Zell-Kontakten bietet PARD6B einen gut zugänglichen Ansatzpunkt, um polaritätsabhängige transkriptionelle und phänotypische Programme zu analysieren.
PARD6B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PARD6B-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PARD6B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PARD6B-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PARD6B-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PARD6B-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PARD6B-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PARD6B-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PARD6B-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PARD6B-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.