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MRCKα CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403627-ACT | 20 µg | $397.00 |
CDC42BPA kodiert die myotone-Dystrophie-Kinase-verwandte Cdc42-bindende Kinase alpha (MRCKα), eine Serin/Threonin-Kinase, die nachgeschaltet von der Rho-GTPase CDC42 wirkt und die Aktin-Myosin-Kontraktilität reguliert. MRCKα phosphoryliert Substrate wie die Myosin-Leichtkette und trägt über Rho/CDC42-Signalnetzwerke zum Umbau des Zytoskeletts, zur Zellpolarität, zur Dynamik von Zelladhäsionen und zur gerichteten Migration bei. Durch die Koordination der kortikalen Aktinorganisation und des Verhaltens membranöser Ausstülpungen beeinflusst MRCKα Prozesse wie die epitheliale Morphogenese und invasive Motilitätsprogramme. Eine fehlregulierte CDC42BPA/MRCKα-Aktivität und die damit verbundenen zytoskelettalen Signale wurden mit der Migration von Krebszellen und metastaseassoziierten Phänotypen in Verbindung gebracht, ebenso wie mit weiteren Erkrankungen, die mit abweichender Zellform und -bewegung zusammenhängen.
MRCKα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CDC42BPA-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
MRCKα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CDC42BPA-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CDC42BPA-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen MRCKα-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CDC42BPA-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von MRCKα-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des MRCKα-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CDC42BPA-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.