Plasmide CRISPR/Cas9 KO galectin-3 (m2): sc-421416-KO-2

Présentation

Le gène murin **Lgals3** code la galectine‑3, une lectine liant les β‑galactosides qui régule les interactions cellule‑cellule et cellule‑matrice en se fixant à des récepteurs glycosylés dans la matrice extracellulaire et à la membrane plasmique. La galectine‑3 participe à la signalisation de l’immunité innée, à l’activation des macrophages et aux réseaux de cytokines inflammatoires, et elle influence également la survie, l’adhérence et la motilité cellulaires via des voies liées à la signalisation intégrine/FAK et à des réponses associées à MAPK/PI3K. En plus de ses fonctions de lectine extracellulaire, la galectine‑3 intracellulaire peut moduler l’apoptose et les réponses au stress en interagissant avec des adaptateurs de signalisation et des composants du cytosquelette. Une expression ou une localisation dérégulée de la galectine‑3 a été associée à la fibrose, à des états inflammatoires chroniques et à des phénotypes de progression tumorale, faisant de **Lgals3** une cible utile pour des études mécanistiques en immunologie, en biologie de la matrice extracellulaire et en recherche sur le cancer.

Le galectin-3 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m2) est un ensemble de plasmides conçus pour la disruption ciblée du gène Lgals3 dans les lignées cellulaires mouse. Chaque plasmide du pool co-exprime un sgRNA unique, ciblant un site distinct au sein du locus Lgals3, ainsi que la nucléase Cas9 de Streptococcus pyogenes, et code pour la GFP afin de permettre l'identification par fluorescence et l'enrichissement des cellules transfectées avec succès. Cette stratégie multi-guide augmente la probabilité d'induire des décalages de cadre ou des délétions produisant un knock-out fonctionnel, offrant ainsi une alternative plus robuste aux approches à guide unique. Les cassures double brin (DSB) induites à plusieurs sites sont résolues par jonction non homologue (NHEJ) ou, lorsqu'elles sont utilisées avec le modèle donneur HDR inclus, par réparation dirigée par homologie (HDR) à un site cible défini au sein du locus.

Lorsqu'il est utilisé en conjonction avec le donneur HDR exprimant la RFP, les fluorescences GFP et RFP peuvent être utilisées conjointement pour distinguer les populations de cellules transfectées de celles éditées, rationalisant ainsi les workflows de tri par cytométrie en flux et de sélection de clones.

Donneur de réparation dirigée par homologie (HDR) — Cassette de puromycine avec rapporteur RFP

Pour les applications nécessitant des clones knock-out confirmés et sélectionnables, le galectin-3 plasmide HDR (m2) comprend une construction donneuse HDR contenant une cassette de résistance à la puromycine (PuroR) et un rapporteur protéine fluorescente rouge (RFP), flanquée de bras d'homologie spécifiques à un site cible Lgals3 défini.
Lorsqu'il est co-transfecté avec le plasmide galectin-3 CRISPR/Cas9 KO (m2):

• La cassette PuroR-RFP s'intègre au site de coupure de Cas9 via HDR, perturbant le cadre de lecture ouvert Lgals3.
  La fluorescence RFP fournit un indicateur visuel immédiat de la réussite de l'intégration, permettant l'identification ou le tri par fluorescence des cellules éditées avant ou parallèlement à la sélection par la puromycine.
  Les cellules éditées avec succès sont confirmées par leur résistance à la puromycine, ce qui réduit considérablement la charge de criblage des clones.
  Cette stratégie de sélection est idéale pour générer des lignées cellulaires KO clonales stables destinées à des études fonctionnelles en aval, au criblage de médicaments ou au développement de modèles.

Système de suppression de la cassette Cre-lox

La construction donneuse HDR comporte des sites loxP flanquant la cassette de sélection PuroR-RFP afin de permettre une suppression propre du marqueur après confirmation du clone. L'expression transitoire de la recombinase Cre via le vecteur Cre inclus Cre Vector: sc-418923 excise la cassette, laissant un site loxP résiduel minimal au sein du locus Lgals3 et éliminant les effets de confusion potentiels sur les tests en aval.
Cette approche en deux étapes :

• Minimise la perturbation de l'architecture locale de la chromatine et des éléments régulateurs voisins
  Restaure un contexte génomique quasi-naturel au niveau du locus édité
  Permet la réutilisation de la stratégie de sélection à la puromycine dans la même lignée cellulaire pour des modifications supplémentaires

Caractéristiques principales

• gRNA ciblant le ou les exons Lgals3 essentiels à la fonction galectin-3
  Co-expression de SpCas9 et de sgRNA à partir d'un seul plasmide pour une administration simplifiée
  Donneur HDR avec résistance à la puromycine pour une sélection positive des clones
  Cassette PuroR flanquée de loxP avec vecteur de recombinase Cre pour une suppression transparente du marqueur
  Fourni prêt à l'emploi pour une administration par transfection

Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.