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FAT1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-410778-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
FAT1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-410778-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FAT1 kodiert ein atypisches Cadherin, das als großer transmembraner Regulator der Zelladhäsion und -polarität wirkt und dabei die Organisation des Zytoskeletts, planar-cell-polarity-ähnliche Prozesse sowie kontaktabhängige Signalübertragung koordiniert. FAT1 wird mit der Modulation der Signalstärke des Hippo-Signalwegs und mit Wechselwirkungen zu Wnt/β‑Catenin-assoziierten Programmen in Verbindung gebracht und beeinflusst dadurch Zellmigration, Gewebearchitektur und Mechanotransduktion. Eine fehlregulierte FAT1-Aktivität oder Mutationen wurden bei mehreren Tumorarten beschrieben und stehen zudem mit Entwicklungs- und Nierenphänotypen in Zusammenhang, was die breite Relevanz für Studien zur Morphogenese und epithelialen Integrität unterstreicht. In kultivierten humanen Zellen wird die Perturbation von FAT1 häufig genutzt, um adhäsionsabhängige Signalwege, Invasionsdynamik und die Kontrolle der Polarität zu untersuchen.
FAT1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des FAT1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von FAT1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die FAT1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit FAT1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.