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ERK 2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400043-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ERK 2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400043-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
MAPK1 kodiert ERK2, eine zentrale Serin/Threonin-Kinase in der kanonischen RAS–RAF–MEK–ERK-MAPK-Kaskade, die extrazelluläre Wachstumssignale in phosphorylierungsgetriebene Transkriptionsprogramme übersetzt. ERK2 reguliert Zellzyklusprogression, Differenzierung, Überleben, Migration und Stressantworten über Substrate im Zytosol und Zellkern, darunter Transkriptionsfaktoren und chromatinassoziierte Regulatoren. Eine dysregulierte ERK-Signalübertragung ist in der Krebsbiologie häufig mit abweichender proliferativer Signalgebung verknüpft und trägt über veränderte Rückkopplung und Signalweg-Crosstalk zu Mechanismen entzündlicher und neurodegenerativer Erkrankungen bei. Als zentraler Signalknoten wird ERK2 breit eingesetzt, um Signalwegdynamik, Feedback-Kontrolle und kontextabhängige Signalausgänge zu untersuchen.
ERK 2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des MAPK1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von MAPK1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die MAPK1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit MAPK1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.