Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
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Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Double Nickase Plasmid (h): sc-400785-NIC
- Zielspezies: human
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- Das Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
- gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
- Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
- Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Double-Nickase-Plasmid (h) und Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf DVL1 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
- Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1: sc-8025
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400785-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400785-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
DVL1 kodiert Dishevelled 1 (Dvl-1), ein zentrales zytoplasmatisches Gerüstprotein (Scaffold), das Frizzled-Rezeptoren mit der nachgeschalteten Wnt-Signalübertragung koppelt. Über regulierte Interaktionen und Phosphorylierung koordiniert DVL1 sowohl kanonische Wnt/β‑Catenin‑abhängige Transkriptionsprogramme als auch nichtkanonische Signalwege der planaren Zellpolarität und der Wnt/Ca²⁺‑Signalgebung, die Zytoskelettdynamik, Polarität und Zellmigration prägen. Die DVL1-Aktivität beeinflusst Entwicklungsprozesse, stammzellähnliches Zellverhalten und die Gewebehomöostase; eine aberrante Wnt–Dishevelled‑Signalgebung ist in der Krebsbiologie häufig mit dysregulierter Proliferation und Invasion assoziiert. Diese Eigenschaften machen DVL1 zu einem nützlichen Ziel, um Pathway-Crosstalk, die Assemblierung des Signalosoms und kontextspezifische Wnt‑Outputs in menschlichen Zellen zu untersuchen.
Dvl-1/Dishevelled 1/DVL1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DVL1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DVL1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DVL1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DVL1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.