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CPS1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402014-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CPS1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402014-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Carbamoylphosphat-Synthase 1 (CPS1) kodiert das mitochondriale Enzym, das den geschwindigkeitsbestimmenden Schritt des Harnstoffzyklus katalysiert, indem es Ammoniak und Bicarbonat in einer ATP-abhängigen Reaktion zu Carbamoylphosphat umsetzt. Indem CPS1 die Stickstoffentsorgung und die Arginin-Biosynthese steuert, verknüpft es den mitochondrialen Stoffwechsel mit hepatozellulären Entgiftungsprozessen sowie mit übergeordneten Netzwerken des Aminosäure- und Nukleotidstoffwechsels. Eine veränderte CPS1-Aktivität ist mit Hyperammonämie und Störungen des Harnstoffzyklus assoziiert, und seine Expression kann bei Stoffwechselerkrankungen und Krebs umprogrammiert werden, um Anpassungen im Stickstoffhaushalt zu unterstützen. Diese Eigenschaften machen CPS1 zu einem relevanten Ziel, um mitochondrialen Stickstofffluss, die Regulation des Harnstoffzyklus und metabolische Umverdrahtung in humanen Zellmodellen zu untersuchen.
CPS1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CPS1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CPS1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CPS1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CPS1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.