Date published: 2025-9-9

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Coomassie Stain

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Coomassie Stain est utilisé pour colorer les protéines dans les gels SDS-PAGE.
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ACCÈS RAPIDE AUX LIENS

Le colorant de Coomassie, communément appelé bleu brillant de Coomassie, est une famille de colorants largement utilisés en recherche biochimique pour colorer les protéines dans les applications d'électrophorèse sur gel, telles que le SDS-PAGE. Le colorant se lie aux protéines de manière non spécifique, principalement par des interactions avec des acides aminés basiques (arginine, lysine) et des résidus non polaires dans les protéines, ce qui entraîne une coloration bleue intense des bandes de protéines sur un fond clair ou légèrement coloré. Ce mécanisme de coloration est basé sur les forces de van der Waals et la liaison hydrogène entre les molécules de colorant et la protéine. La coloration de Coomassie est disponible en deux formulations principales : Coomassie Brilliant Blue R-250 et G-250. Le R-250 est connu pour produire une coloration plus intense et plus nette, mais nécessite une solution méthanol-acide acétique-eau pour le décollement, tandis que le G-250, utilisé sous forme colloïdale, produit une coloration plus sensible et nécessite des solvants moins toxiques pour le décollement. Dans les applications de recherche, la coloration de Coomassie est appréciée pour sa simplicité, sa rentabilité et son processus relativement rapide, qui permet de visualiser la pureté des protéines et de quantifier approximativement leur concentration dans les échantillons. La capacité de la coloration à fournir un retour d'information rapide sur l'efficacité des processus d'extraction et de purification des protéines en fait un outil indispensable dans les laboratoires de biologie moléculaire.


Coomassie Stain Références

  1. Première analyse du phosphoprotéome de cellules ovariennes de hamster chinois par électrophorèse.  |  Chen, Z., et al. 2004. J Biomol Tech. 15: 249-56. PMID: 15585821
  2. La suppression de la protéine humaine de liaison au sélénium 1 est un événement tardif dans la carcinogenèse colorectale et est associée à une faible survie.  |  Kim, H., et al. 2006. Proteomics. 6: 3466-76. PMID: 16645984
  3. L'activation de l'intégrine dépendante de la taline est nécessaire à la rétraction du caillot de fibrine par les plaquettes.  |  Haling, JR., et al. 2011. Blood. 117: 1719-22. PMID: 20971947
  4. Les lipides, les détergents et le bleu de Coomassie G-250 affectent la migration des petites protéines membranaires dans les gels natifs bleus: les transporteurs mitochondriaux migrent en tant que monomères et non en tant que dimères.  |  Crichton, PG., et al. 2013. J Biol Chem. 288: 22163-73. PMID: 23744064
  5. Le bleu de Coomassie comme colorant fluorescent dans l'infrarouge proche: une comparaison systématique avec le Sypro Ruby pour la détection des protéines dans le gel.  |  Butt, RH. and Coorssen, JR. 2013. Mol Cell Proteomics. 12: 3834-50. PMID: 24043422
  6. Une procédure de coloration de coomassie en une seule étape et à faible bruit de fond pour les gels de polyacrylamide.  |  Zehr, BD., et al. 1989. Anal Biochem. 182: 157-9. PMID: 2481413
  7. Coloration simple et rapide des protéines dans un gel de polyacrylamide au sulfate de sodium et de dodécyle à l'aide du bleu de Coomassie.  |  Dong, WH., et al. 2018. Methods Mol Biol. 1853: 31-35. PMID: 30097927
  8. La structure du récepteur du facteur de croissance dérivé des plaquettes permet de définir une famille de récepteurs de facteurs de croissance étroitement liés.  |  Yarden, Y., et al. Nature. 323: 226-32. PMID: 3020426
  9. Production et purification de protéines modificatrices de virulence leptospirales riches en cystéine avec ou sans fusion mCherry.  |  Chaurasia, R., et al. 2023. Protein J. 42: 792-801. PMID: 37653175
  10. Propriétés de l'alpha-cristalline liée à la membrane du cristallin: étude de l'organisation à la surface de la membrane.  |  Chandrasekher, G. and Cenedella, RJ. 1997. Exp Eye Res. 64: 423-30. PMID: 9196394

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Coomassie Stain, 500 ml

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500 ml
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